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    Real-time PCR實(shí)驗(yàn)攻略(基本方法一)

    發(fā)布時(shí)間: 2022-03-11  點(diǎn)擊次數(shù): 4321次

    材料與儀器



    步驟


    實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Real-Time PCR)實(shí)驗(yàn)流程
     
    一、RNA的提取(詳見(jiàn)RNA提取及反轉(zhuǎn)錄)
     
    不同組織樣本的RNA提取適用不同的提取方法,因?yàn)镽eal-Time PCR對(duì)RNA樣品的質(zhì)量要求較高,所以,正式實(shí)驗(yàn)前要選擇一款適合自己樣品的提取方法,在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中要防止RNA的降解,保持RNA的完整性。
     
    在總RNA的提取過(guò)程中,注意避免mRNA的斷裂;取2ug進(jìn)行RNA的甲醛變性膠電泳檢測(cè),如果存在DNA污染時(shí),要用DNase I進(jìn)行消化(因?yàn)樵谔幚磉^(guò)程中RNA極易降解,建議體系中加入適量RNA酶抑制劑)
     
    二、DNase I 消化樣品RNA 中的DNA
     


    三、RNA瓊脂糖凝膠電泳
     
    1.  1%的瓊脂糖凝膠電泳凝膠的配制:
     
    1) 稱取瓊脂糖0.45 g放入三角瓶中,向其中加入4.5 ml的10×MOPS緩沖液和39.5 ml的DEPC水,放微波爐里溶化。
     
    2) 待冷卻到60攝氏度左右時(shí),加入1 ml甲醛,搖勻(避免產(chǎn)生氣泡)。倒入凝膠板上凝固30 min。
     
    2.  取各個(gè)RNA樣品4 μl,加入6×RNA電泳上樣緩沖液2 μl混勻,加入變性膠加樣孔中。
     
    3.  120V電壓下電泳25 min。用凝膠紫外分析儀觀察,照相保存。
     



    另外還有一種RNA檢測(cè)方法:
    濃度檢測(cè):取4 μl RNA,加蒸餾水至1 000 μl,混勻。測(cè)OD260、OD280
     
    四、RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA
     
    反轉(zhuǎn)錄程序(以MBI的M-MLV為例)



     
    反轉(zhuǎn)錄引物的選擇與Real-Time PCR引物設(shè)計(jì)的要求
     
    1)隨機(jī)六聚體引物:
    當(dāng)特定mRNA由于含有使反轉(zhuǎn)錄酶終止的序列而難以拷貝其全長(zhǎng)序列時(shí),可采用隨機(jī)六聚體引物這一不特異的引物來(lái)拷貝全長(zhǎng)mRNA。用此種方法時(shí),體系中所有RNA分子全部充當(dāng)了cDNA第一鏈模板,PCR引物在擴(kuò)增過(guò)程中賦予所需要的特異性。通常用此引物合成的cDNA中96%來(lái)源于rRNA。

    2)Oligo(dT):
    是一種僅對(duì)mRNA特異的方法。因絕大多數(shù)真核細(xì)胞mRNA具有3'端Poly(A+)尾,此引物與其配對(duì),僅mRNA可被轉(zhuǎn)錄。由于Poly(A+)RNA只占總RNA的1-4%,故此種引物合成的cDNA比隨機(jī)六聚體作為引物和得到的cDNA在數(shù)量和復(fù)雜性方面均要小。特別適合檢測(cè)多個(gè)基因的表達(dá),這樣可以節(jié)約反轉(zhuǎn)錄的試劑,cDNA可以多次使用,可用于檢測(cè)稀有基因是否表達(dá)、從極少量細(xì)胞中定量檢測(cè)特定mRNA的表達(dá)水平。

    3)特異性引物:
    最特異的反轉(zhuǎn)錄方法是用含目標(biāo)RNA的互補(bǔ)序列的寡核苷酸作為引物,若PCR反應(yīng)用二種特異性引物,第一條鏈的合成可由與mRNA3'端最靠近的配對(duì)引物起始。用此類引物僅產(chǎn)生所需要的cDNA,導(dǎo)致更為特異的PCR擴(kuò)增。
    做 Real Time PCR時(shí),用于SYBR Green I/Eva Green 法時(shí)的一對(duì)引物與一般PCR的引物,在引物設(shè)計(jì)上所要求的參數(shù)是不同的。引物設(shè)計(jì)的要求:
     
    ① Tm=55-65 ℃
     
    ② GC=30-80%
     
    ③ PCR擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度:引物的產(chǎn)物大小不要太大,一般在80-300 bp之間都可。
     
    ④ 引物的退火溫度要高,一般要在 60 ℃以上。
     
    要特別注意避免引物二聚體和非特異性擴(kuò)增的存在。而且引物設(shè)計(jì)時(shí)應(yīng)該考慮到引物要有不受基因組DNA污染影響的能力,即引物應(yīng)該跨外顯子,最好是引物能跨外顯子的接頭區(qū),這樣可以更有效的不受基因組DNA污染的影響。
    至于設(shè)計(jì)軟件,PRIMER3,PRIMER5,PRIMER EXPRESS都應(yīng)該可以的。做染料法最關(guān)鍵的就是尋找到合適的引物和做污染的預(yù)防工作。對(duì)于引物,你要有從一大堆引物中挑出一兩個(gè)能用的引物的思想準(zhǔn)備---尋找合適的引物非常不易。
     
    五、cDNA與引物質(zhì)量檢測(cè)
    取0.2 ml薄壁PCR管,編號(hào)。向各管中加入含染料2×PCR TaqMix10 ul;加入正反向引物各0.5 ul(引物濃度10 uM) ,向管中加入混合的cDNA各1 ul。各管補(bǔ)加水至20 ul。
    組份                   加量 
    2×PCRTaqMix  10 ul 
    10 uMPrimer FW  0.5 ul 
    10 uMPrimer RV  0.5 ul 
    Template DNA  1 ul 
    ddH2O 混勻至20 ul 
     
    混勻,置于TP600PCR儀中。95 ℃ 5 min;95 ℃15 s,60 ℃35 s ,40 cycles;72 ℃ 5 min;4 ℃ pause。
    取擴(kuò)增產(chǎn)物各8 μl,DL2000 分子量標(biāo)準(zhǔn)5 μl/泳道。1%瓊脂糖凝膠120V電壓下電泳25 min。用凝膠紫外分析儀觀察。
     
    選擇特異性好,擴(kuò)增效率高的引物作為實(shí)時(shí)熒光使用引物。
     
    六、利用相對(duì)定量的方法分析目的基因表達(dá)量的情況
    由于RNA純化后得率不同、RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA的效率不同等客觀因素,用于定量分析的初始樣品濃度不同,因此,在進(jìn)行基因表達(dá)調(diào)控研究中都會(huì)用一些看家基因來(lái)標(biāo)準(zhǔn)化,以校正因樣品初始濃度不同而造成的差異。常用的看家基因有beta-actin,GAPDH,18SrRNA等。因此,在做基因表達(dá)調(diào)控分析時(shí)至少要做兩個(gè)基因,目的基因和一個(gè)看家基因。
     
    七、定量 PCR檢測(cè)
    取0.2 ml薄壁PCR管,分別編號(hào)。向各管中加入2×qPCR TaqMix12.5 ul,10 uM各基因正反向引物混合物0.5 ul,對(duì)應(yīng)的cDNA各1 ul。一管中不加模板用作陰性對(duì)照。各管補(bǔ)加水至25 ul。


     
    混勻,置于SLAN熒光定量PCR儀中。95℃5min預(yù)變性后,95℃15 s→65℃35 s(熒光檢測(cè)),40 cycles。熒光定量PCR一般把退火和擴(kuò)增設(shè)成一個(gè)溫度,只在擴(kuò)增出現(xiàn)問(wèn)題時(shí)才會(huì)考慮設(shè)梯度。
     
    (侯哥論文中的:95 °C 10分鐘→95 °C 15秒→60 °C 1分鐘;40個(gè)循環(huán)。)
     
    以雙△Ct值法計(jì)算靶基因相對(duì)表達(dá)水平:
     
    GRP78相對(duì)表達(dá)水平=2-△(△CT)
     
    注:△CT =Ct(GRP78)-Ct(GAPDH); △(△CT)= △CT (LLLI)- △CT (contro1)。
     
    如果在熒光背景信號(hào)階段出現(xiàn)很多拐點(diǎn),可能的原因是體系未混勻或者存在固態(tài)雜質(zhì);
    如果向下探頭后又很快抬頭然后又向下探頭,可能原因是體系中模板量太高,建議模板稀釋后再用。
    如果引物二聚體存在則陰性對(duì)照會(huì)出現(xiàn)抬頭現(xiàn)象,這在Real-Time PCR中很難避免;
    若是陰性對(duì)照的溶解曲線出現(xiàn)和樣品中同樣的峰,說(shuō)明體系配置中存在污染,則實(shí)驗(yàn)結(jié)果不可用。
     
    在溶解曲線中出現(xiàn)雙峰有三種可能:
     
    ① 引物峰,引物峰通常是兩峰中的前面一個(gè),消除的辦法是降低體系中的引物量或重新設(shè)計(jì)引物;
     
    ② 在做基因表達(dá)差異時(shí)容易出現(xiàn)DNA被擴(kuò)增峰(只在引物跨內(nèi)含子時(shí)存在),出現(xiàn)原因是提取RNA時(shí)存在DNA污染,可以通過(guò)電泳驗(yàn)證,這時(shí)要重新消化RNA樣品中的DNA;
     
    ③ 擴(kuò)增非特異,這時(shí)要重新摸擴(kuò)增條件或重新設(shè)計(jì)并驗(yàn)證引物。
     
    八、表達(dá)差異的計(jì)算方法
    絕對(duì)定量通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算起始模板的拷貝數(shù);相對(duì)定量方法則是比較經(jīng)過(guò)處理的樣品和未經(jīng)處理的樣品目標(biāo)轉(zhuǎn)錄本或是目標(biāo)轉(zhuǎn)錄本在不同時(shí)相的表達(dá)差異之間的表達(dá)差異。
     
    2-△△CT方法是實(shí)時(shí)定量PCR實(shí)驗(yàn)中分析基因表達(dá)相對(duì)變化的一種簡(jiǎn)便方法。
     
    在有些情況下,并不需要對(duì)轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行絕對(duì)定量,只需要給出相對(duì)基因表達(dá)差異即可。顯然,我們說(shuō)X基因在經(jīng)過(guò)某種處理后表達(dá)量增加2.5倍比說(shuō)該基因的表達(dá)從1000 拷貝/細(xì)胞增加到2500拷貝/細(xì)胞更加直觀。
     
    2-△△CT方法的推導(dǎo)(詳見(jiàn)實(shí)時(shí)定量PCR和2-△△CT法分析基因相對(duì)表達(dá)量)
     
    補(bǔ)充:在DNase I 消化樣品RNA 中的DNA后,需要對(duì)樣品重新進(jìn)行氯仿抽提,具體實(shí)驗(yàn)流程如下:
     
    消化后總體積100 ul,體積太少,不利于抽提,我們往往補(bǔ)加200 ulDEPC水。
     
    1. 向離心管中加入等體積氯仿(約300 ul) ,劇烈顛倒,充分混勻至中層出現(xiàn)白色片狀沉淀。4℃14 000 rpm離心8 min,取上清(約250 ul)。
     
    2. 加入1/10體積的NaAC(3 M)(約25 ul)和預(yù)冷的等體積異丙醇(約280 ul),-20℃放置20 min。
     
    3. 4℃14 000 rpm離心15 min,去上清,注意不要觸到沉淀。
     
    4. 加入1 ml的75%乙醇,4℃14 000 rpm離心3 min,去上清。
     
    5. 瞬時(shí)離心,用200 ul(或10 ul)的槍頭小心吸去離心管底的殘存液態(tài)(勿吸到管底的沉淀)。
     
    6. 把離心管放置于超凈臺(tái)晾至約5-10 分鐘(勿*干燥,否則很難溶)。加入30~50 μl的無(wú)RNase的水,靜止1 min 后,振蕩30sec,瞬時(shí)離心。
     
    7. 將提取的RNA立即進(jìn)行下游實(shí)驗(yàn),或放-20 ℃保存。


    注意事項(xiàng)


    北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院阜外心血管病醫(yī)院心外科心血管病國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室吳益和分享
    實(shí)驗(yàn)中必須堅(jiān)持的一些好習(xí)慣
    1. 加入試劑之前,把它混勻一下,以免放置時(shí)間長(zhǎng)了濃度不均。
    2. 移液槍用完之后要?dú)w到最大計(jì)量的位置,防止久而久之彈簧失去彈性。
    3. 所有的試劑都自己配,出了問(wèn)題才好找原因一. 防止RNA酶污染的措施。
    一、防止RNA酶污染的措施
    1. 所有的玻璃器皿均應(yīng)在使用前于180 ℃的高溫下干烤6 h或更長(zhǎng)時(shí)間。
    2. 塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿沖洗(注意:有機(jī)玻璃器具因可被氯仿腐蝕,故不能使用)。
    3. 有機(jī)玻璃的電泳槽等,可先用去污劑洗滌,雙蒸水沖洗,乙醇干燥,再浸泡在3% H2O2 室溫10 min,然后用0.1% DEPC水沖洗,晾干。
    4. 配制的溶液應(yīng)盡可能的用0.1% DEPC,在37 ℃處理12 h以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑,應(yīng)當(dāng)用DEPC處理過(guò)的無(wú)菌雙蒸水配制,然后經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾除菌。
    5. 操作人員戴一次性口罩. 帽子. 手套,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中手套要勤換。
    6. 設(shè)置RNA操作專用實(shí)驗(yàn)室,所有器械等應(yīng)為專用。
     

     


    同實(shí)驗(yàn)其他方法

    實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)

    一、 樣品RNA的抽提 1. 取凍存已裂解的細(xì)胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。 2. 兩相分離 每1 ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2 ml的氯仿,蓋緊管蓋。手動(dòng)劇烈振蕩管體15秒后

    Real-time PCR實(shí)驗(yàn)攻略(基本方法二)

    二、DEPC處理方法如下1. DEPC處理(1)DEPC水:100 ml超純水加入0.2 ml DEPC,充分混勻,高壓滅菌。(2) Tip頭(槍頭). EP管等在提RNA過(guò)程中及做RT時(shí)接觸RNA的


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